常見細(xì)胞污染
細(xì)胞污染——培養(yǎng)物出現(xiàn)渾濁、混濁。培養(yǎng)液pH值升高,液黃。細(xì)胞異常的形態(tài),如胞質(zhì)內(nèi)細(xì)菌吞噬體。細(xì)胞的生長速率減緩,對數(shù)生長期變得不規(guī)律。異常的細(xì)胞死亡或細(xì)胞溶解情況。
真菌污染——培養(yǎng)液可能出現(xiàn)異味。培養(yǎng)皿內(nèi)有異常的顏色、紋理或斑點。細(xì)胞顯示出不正常的細(xì)胞形態(tài),如真菌吞噬體或真菌絲狀體。細(xì)胞的生長速率可能受到抑制,細(xì)胞數(shù)量不斷減少。
支原體污染——支原體污染通常不會導(dǎo)致明顯的細(xì)胞培養(yǎng)液變化。因此,支原體污染通常需要PCR或DNA雜交來檢測。可能出現(xiàn)感染跡象,如出現(xiàn)包涵體或囊泡。細(xì)胞的生長速率減緩。
常見污染處理
因污染會改變細(xì)胞表型,在細(xì)胞種子充足及排除污染因素的情況下,首先丟棄污染細(xì)胞,重新復(fù)蘇。
在未檢測的情況下沿用當(dāng)前細(xì)胞試劑及耗材可能導(dǎo)致污染擴(kuò)散,應(yīng)及時滅菌或丟棄。
如果懷疑細(xì)胞培養(yǎng)受到污染,應(yīng)立即采取行動來確認(rèn)并解決問題。常見的處理方法包括:
1.隔離:將受污染的培養(yǎng)物隔離,并最后處理污染細(xì)胞,以防止污染蔓延到其他培養(yǎng)物中。
2.污染源排除:查找和消除污染的來源,可使用無抗LB搖菌培養(yǎng)或污染檢測試劑。
3.更換培養(yǎng)液:將受污染的培養(yǎng)液更換為新的培養(yǎng)液,細(xì)菌污染添加敏感抗生素如氨芐青霉素,真菌添加兩性霉素B,支原體添加氧氟沙星以控制污染。
4.細(xì)胞重新傳代:如有必要,將細(xì)胞重新傳代到新的培養(yǎng)皿中,離心速度低于平時,200-300g。
5.污染檢測:進(jìn)行污染檢測,以確認(rèn)污染的類型和程度,從而采取適當(dāng)?shù)拇胧?/span>
操作手冊
● 原代細(xì)胞提取
● 血清更換注意事項及步驟
● 血清儲存及化凍
● 持續(xù)更新中
原代細(xì)胞提取-1
固體組織樣品(肝,肺,腫瘤等)
1.分離組織后立即移入超凈臺操作(<20min),或放入組織保存液中四度保存(不超過48h)。
注意:以下步驟均需無菌操作,且保持低溫!
2.取一無菌小皿,加入3ml預(yù)冷的PBS,放入組織清洗。重復(fù)此步驟一次。
3.用無菌剪和無菌鑷(高溫高壓滅菌)去除脂肪或壞死區(qū)域等非目標(biāo)組織。
4.轉(zhuǎn)移組織塊至一無菌15ml/50ml離心管中,加入組織體積10倍的advanced DMEM/F12培養(yǎng)基(緩沖液可自行調(diào)整,與后續(xù)培養(yǎng)體系一致)。離心管置于冰上,用無菌剪將組織剪成肉泥狀。(此步驟注意低溫)
5.四度600g離心5分鐘,去上清,加入消化液(浸沒組織),37℃搖床(800rpm)消化15min,視解離狀態(tài)調(diào)整消化時間,一般不超過45min。(消化液需視組織類型自行調(diào)整。一般組成為膠原酶1和4,濃度為400-1000U/ml,以及核酸酶5-20U/ml,可選擇添加10uM ROCK抑制劑以提高組織活率。)
原代細(xì)胞提取-2
6.消化結(jié)束立即冰上,加入體積6%的血清終止消化,四度離心棄上清,用巴氏管吸取1-2ml全培養(yǎng)基重懸后細(xì)胞濾網(wǎng)過濾,根據(jù)后續(xù)目的和細(xì)胞類型選擇濾網(wǎng)大?。惼鞴傩枰?xì)胞團(tuán)一般選擇較大的100um,建庫的單細(xì)胞懸液一般選擇70um或更?。?。
7.視上一步沉淀顏色選擇是否裂紅,裂紅至沉淀無明顯紅色即可。裂紅液現(xiàn)配,至少10ml,常溫避光裂紅10min。
8.用巴氏管充分混勻細(xì)胞懸液,吸取10ul細(xì)胞懸液與2x臺盼藍(lán)混勻后計數(shù)板計數(shù)。一般細(xì)胞活性>85%為達(dá)標(biāo)。如不達(dá)標(biāo),則低速(200-300g)四度離心后棄上清,重懸,再次計數(shù)和測量活性,直至達(dá)標(biāo)。)
9.計算所需細(xì)胞數(shù)量并進(jìn)行下一步操作,直接種板培養(yǎng),點膠,或上機(jī)等。
液體樣品(血液,胸水,腹水等)
1.直接600g四度離心5min后棄上清,用medium重懸清洗兩次。
2.過濾可選,直接進(jìn)入裂紅判斷步驟
3.后續(xù)步驟同上。